usfdУльтразвуковая и функциональная диагностикаUltrasound & Functional Diagnostics1607-07712408-9494Vidar Ltd.usfd-236Research ArticleУльтразвуковая диагностика заболеваний внутренних органовGeneral UltrasoundУльтразвуковая эластография сдвиговой волной при микролитиазе яичекUltrasound Shear Wave Elastography in Patients with Testicular MicrolithiasisГогаеваИрина МуратовнаGogaevaI. M.irina110687@mail.ruКазачокИ. В.KazachokI. V.noemail@neicon.ruМитьковаМ. Д.MitkovaM. D.noemail@neicon.ruМитьковВ. В.MitkovV. V.noemail@neicon.ruГБОУ ДПО “Российская медицинская академия последипломного образования” Министерства здравоохранения Российской ФедерацииРоссияRussian Medical Academy of Postgraduate EducationRussian FederationГАУЗ г. Москвы “Московская городская онкологическая больница №62 Департамента здравоохранения города Москвы”РоссияMoscow City Oncology Hospital No. 62Russian Federation201630032024034248Copyright © Гогаева И.М., Казачок И.В., Митькова М.Д., Митьков В.В., 20242024Гогаева И.М., Казачок И.В., Митькова М.Д., Митьков В.В.Gogaeva I.M., Kazachok I.V., Mitkova M.D., Mitkov V.V.This work is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 License.https://usfd.vidar.ru/jour/article/view/236

Проведена оценка жесткости паренхимы яичек у пациентов с отграниченным (до 5 микролитов) и классическим (5 и более микролитов) типами микролитиаза. Двумерная эластография сдвиговой волной осуществлялась на аппарате Aixplorer (SuperSonic Imagine, Франция) широкополосным линейным датчиком с диапазоном частот от 4,0 до 15,0 МГц. Значения модуля Юнга измерялись в области микролитов и неизмененной паренхимы. Сравнения проводились с контрольной группой пациентов. Размеры микролитов колеблются от 0,7 до 2,9 мм (n = 60). При эластографии сдвиговой волной в рекомендованном диапазоне значений модуля Юнга (50 кПа) отмечается однородное окрашивание внутри цветового окна, невзирая на наличие неоднородности ткани яичка в серошкальном режиме. Определяются достоверные различия значений модуля Юнга (Emean и Emax), измеренных в области микролитов и неизмененной паренхимы. При сравнении с контрольной группой достоверные различия определяются только для участков с микролитами, тогда как значения модуля Юнга неизмененной паренхимы (вне микролитов) достоверно от группы контроля не отличаются. Размеры микролитов не коррелируют со значениями эластографических параметров. При оценке жесткости паренхимы яичек в случаях микролитиаза измерения желательно проводить в свободных от гиперэхогенных структур участках, при наличии множественных гиперэхогенных структур необходимо иметь в виду факт их влияния на количественные значения параметров жесткости.

Testes parenchyma stiffness assessment was performed in patients with limited (less than five microliths) and classic microlithiasis (with five or more microliths on any single view). The study was performed on Aixplorer scanner (SuperSonic Imagine, France) with wideband linear probe (4-15 MHz). Young’s modulus values were assessed with microliths in the ROI and in normal parenchyma. Comparison with the control group was done. Microliths size varied from 0.7 to 2.9 mm (n = 60). Despite of the testis heterogeneity on gray scale ultrasound homogenous staining in the color window was seen during the shear wave elastography with the recommended range of the Young’s modulus (50 kPa). There were significant differences between the Young’s modulus values (Emean and Emax) assessed in microliths area and normal parenchyma. Comparison with the control group showed significant differences for microliths area only. There was not any significant difference of Young’s modulus within the normal parenchyma comparing to the control group. Size of microliths did not correlate with elastography parameters. It is recommended to assess stiffness of testes parenchyma avoiding hyperechoic areas. Multiple hyperechoic structures can affect on quantitative stiffness characteristics.

мультипараметрическая ультразвуковая диагностикаультразвуковая эластографияэластография сдвиговой волнойжесткостьмодуль Юнгаскорость сдвиговой волнымикролитиаз яичекmultiparametric ultrasoundultrasound elastographyshear wave elastographystiffnessYoung’s modulusshear wave velocitytesticular microlithiasisReferencesRichenberg J., Belfield J., Ramchandani P. et al. Testicular microlithiasis imaging and follow-up: guidelines of the ESUR scrotal imaging subcommittee // Eur. Radiol. 2015. V. 25. No. 2. P. 323330.Richenberg J., Belfield J., Ramchandani P. et al. Testicular microlithiasis imaging and follow-up: guidelines of the ESUR scrotal imaging subcommittee // Eur. Radiol. 2015. V. 25. No. 2. P. 323330.Митьков В.В. Практическое руководство по ультразвуковой диагностике. Общая ультразвуковая диагностика. М.: Видар, 2011. 720 с.Митьков В.В. Практическое руководство по ультразвуковой диагностике. Общая ультразвуковая диагностика. М.: Видар, 2011. 720 с.Patel K.V., Navaratne S., Bartlett E. et al. Testicular microlithiasis: is sonographic surveillance necessary? Single centre 14 year experience in 442 patients with testicular microlithiasis // Ultraschall Med. 2016. V. 37. No. 1. P. 68-73.Patel K.V., Navaratne S., Bartlett E. et al. Testicular microlithiasis: is sonographic surveillance necessary? Single centre 14 year experience in 442 patients with testicular microlithiasis // Ultraschall Med. 2016. V. 37. No. 1. P. 68-73.Cornud F., Amar E., Hamida K. et al. Ultrasound findings in male hypofertility and impotence // Eur. Radiol. 2001. V. 11. No. 11. P. 2126-2136.Cornud F., Amar E., Hamida K. et al. Ultrasound findings in male hypofertility and impotence // Eur. Radiol. 2001. V. 11. No. 11. P. 2126-2136.Backus M.L., Mack L.A., Middleton W.D. et al. Testicular microlithiasis: imaging appearances and pathologic correlation // Radiology. 1994. V. 192. No. 3. P. 781-785.Backus M.L., Mack L.A., Middleton W.D. et al. Testicular microlithiasis: imaging appearances and pathologic correlation // Radiology. 1994. V. 192. No. 3. P. 781-785.Trottmann M., Marcon J., D’Anastasi M. et al. The role of VTIQ as a new tissue strain analytics measurement technique in testicular lesions // Clin. Hemorheol. Microcirc. 2014. V. 58. No. 1. P. 195-209.Trottmann M., Marcon J., D’Anastasi M. et al. The role of VTIQ as a new tissue strain analytics measurement technique in testicular lesions // Clin. Hemorheol. Microcirc. 2014. V. 58. No. 1. P. 195-209.Sun Z., Xie M., Xiang F. et al. Utility of real-time shear wave elastography in the assessment of testicular torsion // PLoS One. 2015. V. 10. No. 9. P. e0138523. Doi: 10.1371/journal.pone.0138523.Sun Z., Xie M., Xiang F. et al. Utility of real-time shear wave elastography in the assessment of testicular torsion // PLoS One. 2015. V. 10. No. 9. P. e0138523. Doi: 10.1371/journal.pone.0138523.Trottmann M., Marcon J., D’Anastasi M. et al. Shear-wave elastography of the testis in the healthy man - determination of standard values // Clin. Hemorheol. Microcirc. 2016. V. 62. No. 3. P.273-281.Trottmann M., Marcon J., D’Anastasi M. et al. Shear-wave elastography of the testis in the healthy man - determination of standard values // Clin. Hemorheol. Microcirc. 2016. V. 62. No. 3. P.273-281.Mahafza W.S., Alarini M.Y., Awadghanem A.F. et al. Testicular microlithiasis: correlation with doppler sonography of testicular arteries and sperm function // J. Clin. Ultrasound. 2016. Doi: 10.1002/jcu.22363.Mahafza W.S., Alarini M.Y., Awadghanem A.F. et al. Testicular microlithiasis: correlation with doppler sonography of testicular arteries and sperm function // J. Clin. Ultrasound. 2016. Doi: 10.1002/jcu.22363.Nistal M., Martinez-Garcia C., Paniagua R. The origin of testicular microliths // Int. J. Androl. 1995. V. 18. No. 4. P. 221-229.Nistal M., Martinez-Garcia C., Paniagua R. The origin of testicular microliths // Int. J. Androl. 1995. V. 18. No. 4. P. 221-229.De Jong B.W., De Gouveia Brazao C.A., Stoop H. et al. Raman spectroscopic analysis identifies testicular microlithiasis as intratubular hydroxyapatite // J. Urol. 2004. V. 171. No. 1. P. 92-96.De Jong B.W., De Gouveia Brazao C.A., Stoop H. et al. Raman spectroscopic analysis identifies testicular microlithiasis as intratubular hydroxyapatite // J. Urol. 2004. V. 171. No. 1. P. 92-96.Drut R., Drut R.M. Testicular microlithiasis: histologic and immunohistochemical findings in 11 pediatric cases // Pediatr. Dev. Pathol. 2002. V. 5. No. 6. P. 544-550.Drut R., Drut R.M. Testicular microlithiasis: histologic and immunohistochemical findings in 11 pediatric cases // Pediatr. Dev. Pathol. 2002. V. 5. No. 6. P. 544-550.Shanmugasundaram R., Singh J.C., Kekre N.S. Testicular microlithiasis: is there an agreed protocol? // Indian J. Urol. 2007. V. 23. No. 3. P. 234-239.Shanmugasundaram R., Singh J.C., Kekre N.S. Testicular microlithiasis: is there an agreed protocol? // Indian J. Urol. 2007. V. 23. No. 3. P. 234-239.Winter T.C., Kim B., Lowrance W.T., Middleton W.D. Testicular microlithiasis: what should you recommend? // Am. J. Roentgenol. 2016. V. 206. No. 6. P. 1164-1169.Winter T.C., Kim B., Lowrance W.T., Middleton W.D. Testicular microlithiasis: what should you recommend? // Am. J. Roentgenol. 2016. V. 206. No. 6. P. 1164-1169.Dede O., Teke M., Daggulli M. et al. Elastography to assess the effect of varicoceles on testes: a prospective controlled study // Andrologia. 2016. V. 48. No. 3. P. 257-261.Dede O., Teke M., Daggulli M. et al. Elastography to assess the effect of varicoceles on testes: a prospective controlled study // Andrologia. 2016. V. 48. No. 3. P. 257-261.

The authors declare that there are no conflicts of interest present.